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大鼠肺炎病毒(PVM)試劑盒說明書
點擊次數 :1210 更新時間 :2016-05-11

   本用於測定大鼠血清 、血漿及相關液體樣本中肺炎病毒(PVM)表達 。

實驗原理

   本試劑盒應用雙抗體夾心法測定標本中大鼠肺炎病毒(PVM)表達 。用純化的大鼠肺炎病

毒(PVM)抗體包被微孔板 ,製成固相抗體 ,可與樣品中肺炎病毒(PVM)相結合 ,經洗

滌除去未結合的抗體和其他成分後再與 HRP 標記的肺炎病毒(PVM)抗體結合 ,形成抗體

抗原 酶標抗體複合物 ,經過*洗滌後加底物 TMB 顯色 。TMB 在 HRP 酶的催化下轉化

成藍色 ,並在酸的作用下轉化成zui終的黃色 。用酶標儀在 450nm 波長下測定吸光度(OD 值) ,

與 CUTOFF 值相比較 ,從而判定標本中大鼠肺炎病毒(PVM)的存在與否 。

組成

 

  1  30 倍濃縮洗滌液

  2  酶標試劑

  3  酶標包被板

  4  樣品稀釋液

  5  顯色劑 A 液

  6  顯色劑 B 液

  標本要求

  20ml×1 瓶

  6ml×1 瓶

  12 孔×8 條

  6ml×1 瓶

  6ml×1 瓶

  6ml×1/瓶

  7  終止液

  8  陽性對照

  9  陰性對照

  10  說明書

  11  封板膜

  12  密封袋

  6ml×1 瓶

  0.5ml×1 瓶

  0.5ml×1 瓶

  1 份

  2 張

  1 個

 

  1.標本采集後盡早進行提取 ,提取按相關文獻進行 ,提取後應盡快進行實驗 。若不能

馬上進行試驗 ,可將標本放於20℃保存 ,但應避免反複凍融

  2.不能檢測含 NaN3 的樣品 ,因 NaN3 抑製辣根過氧化物酶的(HRP)活性 。

操作步驟

  1. 編號 :將樣品對應微孔按序編號 ,每板應設陰性對照 2 孔 、陽性對照 2 孔 、空白對照 1

孔(空白對照孔不加樣品及酶標試劑 ,其餘各步操作相同)

   2. 加樣 :分別在陰 、陽性對照孔中加入陰性對照 、陽性對照 50!l 。然後在待測樣品孔先

加樣品稀釋液 40!l ,然後再加待測樣品 10!l 。加樣將樣品加於酶標板孔底部 ,盡量不

觸及孔壁 ,輕輕晃動混勻 ,

  3. 溫育 :用封板膜封板後置 37℃溫育 30 分鍾 。

  4. 配液 :將 30 倍濃縮洗滌液用蒸餾水 30 倍稀釋後備用

  5. 洗滌 :小心揭掉封板膜 ,棄去液體 ,甩幹 ,每孔加滿洗滌液 ,靜置 30 秒後棄去 ,如此

重複 5 次 ,拍幹 。

  6. 加酶 :每孔加入酶標試劑 50!l ,空白孔除外 。

  7. 溫育 :操作同 3 。

  8. 洗滌 :操作同 5 。

  9. 顯色 :每孔先加入顯色劑 A50!l ,再加入顯色劑 B50!l ,輕輕震蕩混勻 ,37℃避光顯色

  10 分鍾.

  10. 終止 :每孔加終止液 50!l ,終止反應(此時藍色立轉黃色) 。

  11. 測定 :以空白空調零 ,450nm 波長依序測量各孔的吸光度(OD 值) 。 測定應在加終止

液後 15 分鍾以內進行 。

操作程

 

計算和結果判定 :

試驗有效性:陽性對照孔平均值≥1.00;  陰性對照平均值≤0.10 

臨界值(CUT OFF)計算 :臨界值=陰性對照孔平均值+0.15 

陰性判定 :樣品 OD 值<  臨界值(CUT OFF)者為肺炎病毒(PVM)陰性

陽性判定 :樣品 OD 值≥  臨界值(CUT OFF)者為肺炎病毒(PVM)陽性

 。

注意事項

  1.操作嚴格按照說明書進行 ,本試劑不同批號組分不得混用 。

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