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植物無糖組織培養技術
點擊次數 :2002 更新時間 :2016-04-29

    植物無糖組培快繁技術(Sugar-free micropropagation)又稱為光自養微繁殖技術(Photoautotrophic micropropagation)是指在植物組織培養中改變碳源的種類 ,以CO2代替糖作為植物體的碳源 ,通過輸入CO2氣體作為碳源 ,並控製影響試管苗生長發育的環境因子 ,促進植株光合作用 ,使試管苗由兼養型轉變為自養型 ,進而種苗的一種新的植物微繁殖技術 。這一技術概念是在1980年提出的 ,其技術發明人是日本千葉大學的古在豐樹教授 。20世紀90年代以後 ,這一技術成為植物微繁殖研究的新領域 ,受到廣泛的關注 ,無糖組織培養技術也在各國開始得到推廣應用 。特別是近幾年來 ,從事這一技術領域研究的科技人員越來越多 ,這一技術也逐漸成熟 ,並開始應用於植物微繁殖工廠化 。本文從植物無糖組織培養技術的特點 、優勢 、限製因素 、研究進展和應用前景等方麵對這一技術進行了綜述 。

1.植物無糖組培快繁的技術特點

  (1)CO2代替了糖作為植物體的碳源

   在一般的有糖培養微繁殖中 ,小植物是以糖(如蔗糖 、白砂糖 、果糖等)作為主要碳源進行異養或兼養生長 ,糖被看作是植物組織培養中*的物質添加到培養基中 。而無糖培養微繁殖是以CO2作為小植株的*碳源 ,通過自然或強製性換氣係統供給小植株生長所需CO2 ,促進植物的光合作用進行自養生長 。

  (2)環境控製促進植株的光合速率

   在傳統的組織培養中 ,很少對植株生長的微環境進行研究 ,研究的重點是放在培養基的配方以及激素的用量和有機物質的添加上 ;而無糖組織培養技術是建立在對培養容器內環境控製的基礎上 ,根據容器中植株生長所需的環境條件(如光照強度 、CO2濃度 、環境濕度 、溫度 、培養基質等)來對植株生長的微環境進行控製 ,zui大限度地提高小植株的光合速率 ,促進植株的生長 。

  (3)使用多功能大型培養容器

   在傳統的組織培養中 ,由於培養基中糖的存在 ,為了防止汙染 ,一般使用或者說隻能使用小的培養容器 。而無糖培養在培養過程中不使用糖及各類有機物質 ,地避免了汙染的發生 ,可以使用各種類型的培養容器 ,小至試管 ,大至培養室 。

  (4)多孔的無機材料作為培養基質

   在傳統的組織培養中 ,通常使用瓊脂作為培養基質,而無糖培養主要是采用多孔的無機物質 ,如蛭石 、珍珠岩 、纖維 、Florialite(一種蛭石和纖維的混合物)作為培養基質 ,可以地提高小植株的生根率和生根質量 。

  (5)閉鎖型培養室

   傳統組織培養中的培養室是半開放的 ,有許多的窗戶以利於陽光直接進入培養室 ,但自然光在進入培養室的同時也增加了降溫的成本 ,而且 ,一年四季 、春夏秋冬 ,晴天 、陰天 、雨天 ,早晨 、中午 、下午 、光的強度和分布是不均勻的 。而無糖培養采用的是閉鎖型的培養室 ,通過人工或自動調控整個培養室環境 ,能周年進行穩定的 。

2.植物無糖組培快繁技術的優勢

  植物無糖組織培養技術改革了傳統的用糖和瓶子作為碳源營養和生存空間的技術方法 ,增加了植物生長和生化反應所需的物質流的交換和循環 ,促進植株的生長和發育 ,實現了苗低成本的 。*如下 :

 (1)通過人工控製動態調整優化植物生長環境 ,為種苗繁殖生長提供的CO2濃度 、光照 、濕度 、溫度等環境條件 ,提高植株的光合速率 ,促進了植株的生長發育,苗齊 、苗壯 。

 (2) 繼代與生根培養過程合二為一 ,培養周期縮短了40%以上 。

 (3) 大幅度減少了植物微繁殖過程中的微生物汙染率 。

 (4) 消除了小植株生理和形態方麵的紊亂 ,種苗質量顯著提高 。

 (5) 提高了植株的生根率和生根質量 ,特別是對於木本植物來說 ,地植株的生根率和生根質量 ,試管苗移栽成活率顯著提高 。

 (6) 節省投資 ,降低成本 。與傳統的微繁殖技術相比 ,種苗綜合成本平均降低30% 。

 (7) 組培工藝的簡單化 ,流程縮短 ,技術和設備的集成度提高 ,降低了操作技術難度和勞動作業強度 ,更易於在規模化上推廣應用 。

 (8) 培養不受培養容器的限製 ,可實現穴盤苗商業化 ,也可實現大規模容器自動工廠化 。
3.植物無糖組培快繁技術的限製因素

 (1)需要相對複雜的微環境(容器內環境)控製的知識和技巧

  植物無糖組織培養微繁殖的研究和試驗已經非常成功 ,但實際應用還是受到一定的限製 ,其中的一個主要原因就是需要應用微環境控製方麵專業的技術 。沒有充分理解容器中小植株的生理特性 ,容器內的環境 ,容器外的環境 ,培養容器的物理或構造特性之間的關係 ,將不可能成功地應用光自養微繁殖係統 ,使用zui少的能源和原料高品質的植株 。光自養微繁殖控製係統的複雜性會導致設施設計的失敗 ,必須在充分認識和理解了光自養微繁殖的原理後 ,才能取得成功 。

 (2)培養的植物材料受到限製

  與一般的微繁殖相比 ,光自養微繁殖需要較高質量的芽和莖 ,外植體需具有一定的葉麵積 ,帶綠色子葉的體細胞胚也可進行光自養生長 。外植體的質量越好培養效果越佳 。

4.植物無糖組培快繁技術研究進展

    植物無糖組織培養技術經過近20年的發展 ,基礎理論的建立和研究已經成熟 ,但商業化的應用還處於起步階段 。在植物無糖組織快繁技術的應用中 ,CO2的供給和濃度的調控是其關鍵技術之一 。在植物無糖組織培養過程中 ,為了增加培養容器中的CO2濃度 ,可采用兩種不同的CO2補充方式 ,一種是在密封的容器上使用透氣膜 ,通過自然換氣方式提供小植株光合作用所需的CO2(Aitken-Christie et al.,1995) 。隨著無糖組織培養培養容器的不斷增大 ,強製性換氣係統得到了應用(Kozai T. et al.,2000 ;Xiao et al.,2005) 。與自然換氣相比 ,強製性換氣具有CO2濃度容易控製 ,操用方便 ,植物生長發育加快等特點 。Xiao等(2005)在對callalily和Chinafir進行的無糖培養研究表明 ,采用120L的培養容器 ,通過強製性換氣係統直接輸入CO2供植物生長 。與傳統組織培養方式(培養基中添加蔗糖)相比 ,callalily的培養周期縮短50% 、苗木移栽成活率由50%提高到95% ;China fir苗木質量顯著提高 ,繼代和生根過程合二為一 ,且沒有愈傷組織的發生 ,而有糖培養則在基部產生愈傷組織 ,嚴重影響苗木移栽成活率 。Xiao等(2005)等對Gerberas進行的無糖培養研究表明 ,與有糖培養相比 ,采用大規模容器和強製性換氣係統進行的無糖組織培養 ,植株的葉麵積 、莖幹重分別提高5.2和4.6倍 ,植株的淨光合速率和葉綠素含量分別提高9.2和2.2倍 ,苗木生根率和移栽成活率分別由62% 、57%提高到98% 、95% 。(Tanaka M. et al.,2005) 、(Teixeira J.A. et al., 2006)進行桉樹的無糖組織培養研究表明 ,一種新型的小培養容器Vitron能提高試管苗在無糖培養條件下的生長質量 ,適合進行無糖組織培養 。

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